Ribonukleotidreduktase

Ribonukleotiddifosfatreduktase, stor underenhet

Eksisterende strukturelle data : 2WGH , 3HNC , 3HND , 3HNE , 3HNF

Egenskaper av humant protein
Masse / lengde primærstruktur 792 aminosyrer
Sekundær til kvartær struktur Heterodimer
Identifikator
Gennavn RRM1 R1; RIR1; RR1
Eksterne ID-er
Enzymklassifisering
EC, kategori 1.17.4.1 oksidoreduktase
Svarstype Reduksjon av en hydroksylgruppe
Underlag Ribonukleotid difosfat + tioredoksin
Produkter Deoksyribonukleotid difosfat + tioredoksin Disulfide + H 2 O
Hendelse
Parent taxon skapning
Unntak Archaea
Ortolog
menneskelig Husmus
Entrez 6240 20133
Ensemble ENSG00000167325 ENSMUSG00000030978
UniProt P23921 P07742
Refseq (mRNA) NM_001033 NM_009103
Refseq (protein) NP_001024 NP_033129
Gen locus Chr 11: 4,09 - 4,14 Mb Chr 7: 102,44 - 102,47 Mb
PubMed- søk 6240 20133

Ribonukleotiddifosfatreduktase, liten underenhet
Ribonukleotiddifosfatreduktase, liten underenhet
Båndmodell av dimeren til R2-underenheten til klasse I RNR av Escherichia coli , i henhold til FBB  1AV8

Eksisterende strukturelle data : 2UW2 , 3OLJ , 3VPM , 3VPN , 3VPO

Egenskaper av humant protein
Masse / lengde primærstruktur 389 aminosyrer
Sekundær til kvartær struktur Heterodimer
Kofaktor 2 Fe 2+
Identifikator
Gennavn RRM2 R2; RR2; RR2M
Eksterne ID-er
Enzymklassifisering
EC, kategori 1.17.4.1 oksidoreduktase
Svarstype Reduksjon av en hydroksylgruppe
Underlag Ribonukleotid difosfat + tioredoksin
Produkter Deoksyribonukleotid difosfat + tioredoksin Disulfide + H 2 O
Hendelse
Homologi familie RNR-underenhet M2
Parent taxon Euteleostomi
Ortolog
menneskelig Husmus
Entrez 6241 20135
Ensemble ENSG00000171848 ENSMUSG00000020649
UniProt P31350 P11157
Refseq (mRNA) NM_001034 NM_009104
Refseq (protein) NP_001025 NP_033130
Gen locus Chr 2: 10.12-10.13 Mb Chr 12: 24,71 - 24,71 Mb
PubMed- søk 6241 20135

Den ribonukleotidreduktase (ofte kalt RNR er forkortet) et enzym som er det siste ledd i kjeden av syntesen av de DNA- byggestenene ( deoksynukleotider former). Det reduserer , dvs. H. fjerner hydroksylgruppen på karbonatom C-2 'av ribosedelen av nukleotidene. Substrater av enzymet er ribonukleotidfosfater, f.eks. B. adenosindifosfat og cytidindifosfat , i forbindelse med kofaktoren tioredoksin .

Reaksjonen katalysert av ribonukleotidreduktase

Betydning og forekomst

Ribonukleotidreduktase er et uunnværlig enzym i organismen for å produsere DNA-byggesteiner. Det har blitt funnet i nesten alle eukaryote organismer, fra gjær og alger til planter, pattedyr og mennesker. Noen procarionts og virus inneholder også RNA-enzymer.

Siden enzymet reduserer 2'-hydroksygruppen i nukleotidene, kan det også sees på som en kobling mellom DNA- og RNA- verdenen. I denne sammenheng spekuleres det også i om RNR var enzymet som banet vei fra en primitiv RNA-verden til dagens DNA. (Se også: kjemisk evolusjon og ribozym )
Som mange enzymer katalyserer ribonukleotidreduktase også den tilsvarende omvendte reaksjonen ( oksidasjon av deoksynukleotid til nukleotid). Imidlertid spiller denne reaksjonen ingen rolle i biologiske prosesser.

Biologisk funksjon

Ribonukleotidreduktasen forvandler nukleotidene til deres respektive deoksynukleotider. Enzymet skiller ikke ut hvilket nukleotid det er ( adenosin , guanosin , cytidin eller tymidinfosfater ), både di- og de respektive trifosfater er redusert. Monofosfater og (fosfatfrie) nukleosider omdannes ikke.

Reduksjonen skjer antagelig gjennom en elektronoverføringsmekanisme der - som forklart nedenfor - dannes frie radikaler .

Det er flere klasser av ribonukleotidreduktase (klasse I til klasse III). Selv om alle klasser katalyserer den samme reaksjonen , er enzymene strukturelt veldig forskjellige. Klassene er delt inn etter måten systemet genererer det radikale. Hver klasse er delt inn i ytterligere underklasser; men for enkelhets skyld bør dette ikke gjennomføres.

Klasse I.

Klasse I ( EC  1.17.4.1 ) er typen enzym som forekommer hos mennesker og har blitt best studert. Enzymer er aerobe .
Klasse I-RNR består av to forskjellige underenheter: R1 og R2. R1 og R2 har en veldig lav affinitet , slik at enzymet sjelden er til stede som et samlet kompleks. Dette ser også ut til å være grunnen til at det aldri har vært mulig å krystallisere ribonukleotidreduktasen som en helhet .

R1 inneholder flere bindingssteder for effektorer , så vel som bindingslommen ( aktivt sted ) der nukleotidet er redusert. I R2 overføres en radikal til en tyrosinsidekjede , så å si 'lagret' der. Denne radikalen har en forbløffende lang halveringstid på rundt fire dager.

Molekylær struktur av tyrosylradikalen (venstre) med det nærliggende jern-oksygen-jernkomplekset (høyre) som stabiliserer radikalet.

For det katalytiske trinnet må elektronet transporteres fra tyrosylradikalen i R2 til et cystein i R1. Avstanden anslås å være 35  Ångstrøm . Antagelig hopper elektronet over flere aminosyreenheter for å dekke den enorme avstanden (etter molekylære standarder).

Klasse II

Klasse II-RNR ( EC  1.17.4.2 ) forekommer blant andre i organismen Lactobacillus leichmannii . Her radikalet er generert in situ ved å bryte den kobolt - karbon -binding i koenzym B12 . Enzymer i denne klassen er fakultativt aerobe . Du kan jobbe både i nærvær og i fravær av oksygen.

Klasse III

Her overføres radikalen til en glykylsidekjede . Bakteriofag T4 fungerer for eksempel med denne enzymklassen. Klasse III RNR er anaerob , noe som betyr at de bare fungerer i et oksygenfritt miljø.

RNA-enzymene kunne ha utviklet seg fra en felles forfader. Av de anaerobt virkende klasse III-enzymene er Escherichia coli reduktase trolig det nærmeste det hypotetiske "primale enzymet".

Reduksjonsmekanisme

Den nøyaktige prosessen med nukleotidreduksjon er ennå ikke fullstendig belyst. Det er tydelig bevis på en radikal mekanisme, det sentrale trinnet er dannelsen av en tiylradikal, en svovelsentrert radikal. For å gjøre dette lagrer enzymet en stabil radikal som må transporteres inn i bindelommen ved hver omsetning . Etter den kjemiske reaksjonen gjenvinnes radikalen og transporteres tilbake til 'lagringsstedet'. Det antas at elektronen “hopper” over flere aminosyreenheter, som alle er forbundet med hydrogenbindinger .

Følgende diagram viser sekvensen med antatte mellomtrinn som den - fra og med 1998 - diskuteres i vitenskapen.

Biokjemisk mekanisme for reduksjon av et nukleotid
  • Først en radikal overføres til 3 'posisjon på ribose (trinn fra første til andre bildet).
  • Etter å ha delt vann i 2'-posisjonen (fig. 2 → 3), overføres radikalen til to cysteinkjeder av enzymet (fig. 3 → 4).
  • Radikalen overføres deretter tilbake til det opprinnelige cystein via ribose (fig. 4 → 6).

Samlet sett, med oksidasjon av to cystein-sidekjeder, reduseres ribosen til deoksyribose. En DNA-byggestein ble produsert fra en RNA-komponent. Denne byggesteinen er nå klar til å bygges inn i DNA- dobbeltspiralen av DNA-polymerasen .

regulering

Siden RNA bare trenger å være aktiv i spesifikke faser av celledeling, er det mekanismer, som med de fleste enzymer, for å slå RNA av og på. I tillegg reguleres det i et komplisert system nøyaktig hvilken av de fire nukleotidene som skal reduseres. Aktivatorene og effektorene er bare kort oppført her, uten å gå i detalj:

Aktivatorer:

  • ATP aktiverer enzymet
  • dATP deaktiverer den

Effektorer:

  • ATP og dATP → CDP / CTP og UDP / UTP reduseres
  • dGTP → ADP / ATP
  • dTTP → BNP / GTP

Oppdagelse av ribonukleotidreduktase

Siden DNA-strukturen ble belyst av James Watson og Francis Crick i 1953, oppstod spørsmålet om hvordan cellen produserer de enkelte byggesteinene for DNA-polymeren. Åtte år senere ble en enzymblanding isolert fra forskjellige celler for første gang, med høyt aktivitetsnivå for å redusere nukleotider til deres tilsvarende deoksynukleotider.

På 1990-tallet ble de tredimensjonale strukturene til de to underenhetene bestemt separat ved hjelp av krystallstrukturstudier . Spørsmål om mekanismen for forankring av de to underenhetene R1 og R2 til hverandre, transport av radikaler av enzymet over en relativt stor avstand og generering av radikalen under produksjonen av enzymet blir undersøkt.

RNR i kreftforskning og kreftterapi

Ribonukleotidreduktase er også fokus for kreftforskning . Fordi enzymet alltid er nødvendig når cellen deler seg eller trenger å reparere DNA-skade, er cellen avhengig av RNA for vekst. Enzymet er relativt sakte med en omsetningshastighet på ca. 10  s −1 . Dette er ikke et problem på grunn av langsom delingshastighet for normale celler, men kreftceller er hemmet fra rask vekst. Imidlertid er det kreftceller som øker omsetningshastigheten til RNA gjennom endringer. En aktiv ingrediens som blokkerer nøyaktig disse modifiserte enzymene, vil redusere eller til og med stoppe kreftveksten.

I mellomtiden har det blitt utviklet mange hemmere av RNR. For behandling av myeloid leukemi (spesielt når det er tegn på leukostase ) og andre myeloproliferative sykdommer som essensiell trombocytemi og polycytemia vera (rubra), brukes hydroksykarbamid (f.eks. Syrea®, Litalir®) som et kjemoterapeutisk middel.

litteratur

  • BM Sjöberg: Ribonukleotidreduktaser - en gruppe enzymer med forskjellige metallositter og lignende reaksjonsmekanisme , I: PJ Sadler: Metal Sites in Proteins and Models - Iron Centers , In: Structure and Bonding Vol. 88, pp. 139-173, Springer Utgiver, ISBN 3-540-62870-3 .
  • JoAnne Stubbe, Wilfred A. van der Donk: Protein Radicals in Enzyme Catalysis , In: Chemical Reviews Vol. 1998, Vol. 98, s. 705-762.

weblenker

Individuelle bevis

  1. Homologer på OMA
  2. a b Ulla Uhlin, Hans Eklund: Struktur av ribonukleotidreduktaseprotein R1. I: Nature , bind 370, 1994, s. 533-539.
  3. Britt-Marie Sjöberg et al.: To konserverte tyrosinrester i R1 deltar i en intermolekylær elektronoverføring i ribonukleotidreduktase. I: J. Biol. Chem. , Bind 271, nr. 34, 1996, s. 20655-20659.
  4. Peter Reichard: Fra RNA til DNA, hvorfor så mange ribonukleotid reduktase? , I: Science, bind 260, utgave 5115, 18. juni 1993, s. 1773-1777. DOI: 10.1126 / science.8511586
  5. T E. Torrents, P. Aloy, I. Gibert et al.: Ribonucleotide Reductases: Divergent Evolution of an Ancient Enzyme , I: Journal of Molecular Evolution, Vol. 2002, Vol. 55, s. 138-152. https://doi.org/10.1007/s00239-002-2311-7
  6. JoAnne Stubbe , Wilfred A. van der Donk: Protein Radicals in Enzyme Catalysis . I: Chemical Reviews . teip 98 , nr. 2 , 1. april 1998, s. 705-762 , doi : 10.1021 / cr9400875 .
  7. A JoAnne Stubbe, Daniel G. Nocera , Cyril S. Yee, Michelle CY Chang: Radikal initiering i klasse I ribonukleotidreduktase: Protonekoblet elektronoverføring fra lang rekkevidde? I: Chemical Reviews . teip 103 , nr. 6 , 1. juni 2003, s. 2167-2202 , doi : 10.1021 / cr020421u .
  8. A JoAnne Stubbe, Wilfred A. van der Donk: Protein Radicals in Enzyme Catalysis , In: Chemical Reviews Vol. 1998, Vol. 98, s. 705-762.
  9. Peter Reichard, Astor Baldesten, Lars Rutberg: Dannelse av deoksycytidin fosfater fra cytidin fosfater i ekstrakter fra Escherichia coli. I: J Biol Chem . , Bind 236, nr. 4, 1961, s. 1150-1157.
  10. P. Nordlund, B.-M. Sjöberg, H. Eklund: Tredimensjonal struktur av det frie radikale proteinet fra ribonukleotidreduktase. I: Nature , bind 345, 1990, s. 593-598.
  11. Yun Yen: Ribonukleotidreduktase-underenhet en som genterapimål. I: Clinical Cancer Research , Volum 9, 2003, s. 4304-4308.
  12. J. Shao, B. Zhou, Bernard Chu, Y. Yen: Ribonucleotide Reductase Inhibitors and Future Drug Design, In: Current Cancer Drug Targets, Vol. 2006, Vol. 6, s. 409-431.
Denne versjonen ble lagt til i listen over artikler som er verdt å lese den 22. november 2006 .